細(xì)胞支原體污染的熒光檢測(cè)方法
DNA熒光染色法：
1.原理：利用熒光染劑（bisbenzimide, Hoechst 33258）偵測(cè)支原體污染。此染劑會(huì)結(jié)合到DNA之Adenosine-Thymidine （A-T） rich區(qū)域，因?yàn)橹гw之DNA中A-T含量占多數(shù)（55～80%），所以可將其染色而偵測(cè)。被支原體污染之細(xì)胞經(jīng)染色后，在細(xì)胞核外與細(xì)胞周圍可看到許多大小均一之熒光小點(diǎn)，即為支原體之DNA，證明有支原體之污染。
2.測(cè)試步驟用間接步驟，將待測(cè)細(xì)胞懸浮液或細(xì)胞培養(yǎng) 液接種于指示細(xì)胞培養(yǎng)液中（indicator cell，例如Vero cell or 3T6 cell），然后培養(yǎng)指示細(xì)胞再作熒光染色。正負(fù)反應(yīng)對(duì)照組亦可以接種于indicator cell內(nèi)作為對(duì)照。
3.待測(cè)細(xì)胞亦可作直接測(cè)試，但需為吸附型細(xì)胞，培養(yǎng)后直接作熒光染色。有些細(xì)胞易有熒光背景，而干擾結(jié)果判讀，則建議使用接種于指示細(xì)胞之步驟。
4.特點(diǎn)：簡(jiǎn)單、經(jīng)濟(jì)與靈敏，廣泛使用，可作為例行之偵測(cè)步驟。可以偵測(cè)不易培養(yǎng)之支原體，例如M. hyorhinis，較直接培養(yǎng)法快，約一星期即可知道結(jié)果。
5.缺點(diǎn)：有時(shí)仍會(huì)有熒光背景，影響判讀。
材料：
1.Hanks’ balanced salt solution without NaHCO3 or phenol red （HBSS, GibcoBRL 21250-014：、bisbenzimide （Hoechst No.33258, Sigma B-2883）、thimerosol （Sigma T-5125）、0.1M citric acid、02M disodium phosphate、glycerol、glacial acetic acid、methanol、strerile H2O、chamber slide （Nunc 177380）或chamber slide替代物：35 or 60mm sterile plate內(nèi)放置無(wú)菌22x22mm蓋玻片：浸于酒精內(nèi)，使用前過(guò)火滅菌：，一般吸附型細(xì)胞均能吸附在蓋玻片上。染色后取出蓋玻片，細(xì)胞面朝下放在玻片上觀察。
2.Indicator cells：Vero（African green monkey kidney,ATCC CCL-81 or CCRC 60013） or 3T6（mouse fibroblast, ATCC CCL-96 or CCRC 60070），細(xì)胞須先測(cè)試無(wú)污染。αMEM with 10%FBS（ medium for Vero cell）
細(xì)胞支原體污染的熒光檢測(cè)方法
配制試劑：
1.無(wú)菌HBSS：配制Hanks’ balanced salt solution，以0.22mm無(wú)菌過(guò)濾膜過(guò)濾滅菌。勿用高壓蒸汽滅菌。
2.Hoechst 33258 stock solution（100X）：稱取5.0 mg bisbenzimide和10.0 mg thimersol溶于100 ml無(wú)菌HBSS，置于棕色瓶中，室溫下以電磁攪拌器攪拌30分鐘至*溶解后，以1ml分裝至1.5ml小離心管中，貯存于-20℃。
3.Hoechst 33258 working reagent：取1 ml Hoechst 33258 stock solution，加入sterile 100 ml HBSS中，室溫下攪拌45分鐘，置于棕色瓶中并以鋁箔紙包覆，避免光照，貯存于4℃。
4.mounting solution：22.2 ml 0.1 M citric acid和27.8 ml 0.2 M Na2HPO4加入于50 ml glycerol中混合，以1 N NaOH調(diào)整pH至5.5（pH很重要），貯存于4℃。
5.固定溶液（fixative）：冰醋酸與甲醇以1：3之體積比例混合，使用前才配制。
步驟：
1.培養(yǎng)Vero細(xì)胞： Vero細(xì)胞可作長(zhǎng)期培養(yǎng)或制作多個(gè)冷凍保存管，測(cè)試前解凍培養(yǎng)。測(cè)試前一周培養(yǎng)Vero細(xì)胞。
2.在接種測(cè)試樣品前一日，以trypsin-EDTA溶液處理Vero細(xì)胞，制成細(xì)胞懸浮液，以1~2x10^4 cells／ml培養(yǎng)于chamber slide中，每個(gè)well加入1ml細(xì)胞懸浮液，于37℃, 5％CO2培養(yǎng)。隔日確定生長(zhǎng)良好后，即可接種測(cè)試樣品。
3.接種測(cè)試樣品：樣品種類：1ml待測(cè)之培養(yǎng)基，1ml待測(cè)細(xì)胞培養(yǎng) 液（可將細(xì)胞稍微刮下：，0.05~0.1ml冷凍管之細(xì)胞懸浮液。
4.將測(cè)試樣品加入chamber slide內(nèi)，培養(yǎng)5天后，進(jìn)行Hoechst 33258的熒光染色觀察。
5.以Acholeplasma laidlawii ATCC 23206 感染Vero細(xì)胞作為正反應(yīng)對(duì)照組：或是已感染支原體之細(xì)胞培養(yǎng) 液或冷凍細(xì)胞液：，負(fù)反應(yīng)對(duì)照組為Vero cell之新鮮培養(yǎng)基（ αMEM +10%FBS）。
6.DNA熒光染色檢測(cè)：
①取出培養(yǎng)5日之Vero細(xì)胞，吸除培養(yǎng)液。于每個(gè)well中加入2ml 1：3混合的冰醋酸/甲醇固定液，靜置10 min后，吸除固定液。重復(fù)上述之步驟，風(fēng)干10分鐘。②于每個(gè)well中，加入1ml Hoechst 33258 working solution，室溫下靜置30min。③吸掉Hoechst 33258染液后，以無(wú)菌水洗滌3次，風(fēng)干后加入1滴的mounting solution，并以蓋玻片覆蓋之。④以100x-400x熒光顯微鏡觀察。打開(kāi)水銀光源10 min后，以UV激發(fā)光束（330～380 nm）之濾光鏡，觀察細(xì)胞核外是否有藍(lán)色熒光小點(diǎn)或是絲狀點(diǎn)之熒光物產(chǎn)生。
細(xì)胞支原體污染的熒光檢測(cè)方法
結(jié)果判讀：
若有支原體污染，在Vero細(xì)胞核外與細(xì)胞表面會(huì)出現(xiàn)藍(lán)色熒光小點(diǎn)或是絲狀點(diǎn)。其形狀一致，與細(xì)胞殘片染成之不規(guī)則點(diǎn)狀物不同。其熒光可維持?jǐn)?shù)星期。
圖例 （A）為negative result ： 熒光顯微鏡下，只觀察到Vero細(xì)胞的細(xì)胞核，測(cè)試樣品沒(méi)有支原體的污染。（為positive result ： 在Vero細(xì)胞核外與細(xì)胞表面會(huì)出現(xiàn)藍(lán)色熒光小點(diǎn)和絲狀點(diǎn)，表示測(cè)試樣品有支原體的污染。
（A）Negative result
熒光顯微鏡下，只觀察到Vero細(xì)胞的細(xì)胞核，測(cè)試樣品沒(méi)有支原體的污染。
